10 d时各处理 APX 活性最高，其中 T2 处理为 7.96x10 nmol/min/gFW，T3 处理 APX活性为 6.35x103 nmol/min/g·FW，T2 处理高出 T3 处理 25.3%。20 d 时，TI 处理APX 活性为 4.07x103 nmol/min/g·FW，CK 组为 2.16x10 nmol/min/g·FW，T1 处理高出 CK 组 0.88 倍。
在低温下，CK 组和 T3 处理 APX 活性随着贮藏时间的延长而逐渐下降，T1 处理和 T2 处理在 20 d 时活性略有升高后逐渐下降。20 d 时，T2处理 APX 活性为 9.45x103 nmol/min/g.FW ， T1 处理为 8.19x103nmol/min/g·FW，分别高出 CK 组 35.29%和 17.31%。
图 3.4 所示，常温贮藏下，PPO 活性呈现先上升后下降的趋势。各处理 PPO活性均在 15d 时达到最大活性高峰，其中 T1 处理 PPO 活性为 63.30 /g·FW,T2 处理为 62.40 U/gFW，CK 组为 60.60 U/gFW，T3 处理为 59.70 U/g·FW。在相同贮藏时间内，CK 组和 T3 处理 PPO 活性均低于 T1 处理和 T2 处理，说明拮抗菌可以较好的提高 PPO 的活性。低温贮藏期内，各处理 PPO 活性呈现不断上升的趋势。
在 20d 时，PPO 活性上升的速率最高，T1 处理 PPO 活性从 10 d时的 18.00 U/g·FW 上升至 54.80 U/g·FW，升高了 2.04 倍: T2 处理活性从 22.80U/gFW 上升至 58.00 U/g·FW，升高了 1.54 倍。20 d 时，T2 处理 PPO 活性高于CK 组 26.64%，高于 T3 处理 24.73%。
20 d 后，各处理 PPO 活性仍在升高但幅度不高,40 d时 T1 处理 PPO 活性较 20 d时升高了 11.13%,T2 处理升高了 1.90%。常温贮藏下 CK 组与 T2 处理 PPO 活性差距不大，但在低温贮藏下差异明显，说明拮抗菌处理甜瓜在低温贮藏下 PPO 活性更高，能达到更好的贮藏效果。
10 d时各处理活性出现峰值,其中T2处理SOD 活性为 165.89 U/g·FW,T3 处理为 140.62 U/g·FW，T2 处理高于 T3 处理 17.97%。25 d 时，T2 处理 SOD活性降低至 75.73 U/g·FW，T3 处理降低至 44.74 U/gFW，T2 处理高于 T3 处理69.27%。
说明拮抗菌可以延缓 SOD 活性的降低。低温贮藏过程中，T1 处理和T2 处理 SOD 活性呈现先上升后下降趋势，CK 组和 T3 处理呈现先上升后下降再上升的趋势。CK、T1 处理和 T3 处理在 20 d时 SOD 活性出现峰值，T2 处理在30d 时出现峰值。20d 时 CK 组 SOD 活性为 90.64 U/g·FW，T2 处理活性为110.86 U/g·FW，T2 处理比 CK 组高了 22.31%。
30 d 时 CK 组为 32.83 U/gFW,T2 处理为 115.10 U/gFW，T2 处理比 CK 组高了 2.51 倍。说明低温下 T2 处理对甜瓜 SOD 活性的降低有抑制作用。因此，拮抗菌结合低温贮藏有利于维持 SOD活性，从而可以更好地清除细胞内的超氧阴离子，使甜瓜保持较高的品质。
在整个贮藏期间，PAL 活性均呈现先上升后下降的趋势。常温下，各处理均在 10 d 时活性最高，其中 T2 处理活性为 6.30 U/g·FW，是 CK 组的 1.37 倍。在贮藏 20 d 时，T2 处理 PAL 活性为 5.70 U/g·FW，是 CK 组的 1.50倍。
低温下，T1 处理和 T2 处理 PAL 活性均高于 CK 组和 T3 处理。在 20 d 时各处理出现活性最高峰,T1 处理 PAL 活性为 5.71 U/g Fw,其次是 T2 处理为 5.45U/g·FW，CK 组最低为 3.46 /g·FW，T1 处理和 T2 处理分别高于 CK 组 65.03%和 57.51%。
30 d 时，T2 处理 PAL 活性略有降低为 4.67 U/g·FW，CK 处理为 2.16U/g·FW，高出 CK 组 1.16 倍。T1 处理和 T2 处理在常温贮藏 25 d 时 PAL 活性在4.20 U/g·FW 左右，在低温贮藏 40 d 时在 3.60 /g·FW 左右。说明拮抗菌与低温共同处理甜瓜更有效延缓 PAL 活性的降低。
