常温贮藏前期，T1 与 T2 处理失重率低于 T3 处理高于 CK 组，第 15 d 后，T3处理甜瓜果实失重率高于 CK、T1 与 T2 处理。在 25 d 时，T3 处理果实失重率高出T1处理2.98 倍,高出T2处理2.43倍;CK 组果实失重率高出T1 处理97.17%,高出 T2 处理 69.99%。
T3 处理在 15 d 失重率为 18.05%，CK 组在 20 d 失重率达14.78%，严重影响甜瓜品质。而 T1 和 T2 处理在贮藏 25 d 失重率均未到 10%,说明在 25 d 拮抗菌 BG-2 仍可以维持甜瓜品质。低温贮藏条件下，整个贮藏期间甜瓜果实失重率大小顺序为 T3>CK>T2>T1。前 30 d，各处理间果实失重率差异不大，30d 后出现明显差异，其中在 40 d 时，T3 处理果实失重率为 14.8%，T2处理的失重率为 8.3%。
CK 和 T3 处理在 40 d 失重率分别为 13.53%和 14.78%，甜瓜贮藏品质受到影响，而 T1 和 T2 处理在 50d 仍能维持贮藏品质。不同贮藏温度对甜瓜失重率有显著影响,T1 处理在 10 d时,常温贮藏甜瓜失重率为 6.20%,低温贮藏甜瓜失重率为 0.80%: 常温贮藏下，25d时甜瓜失重率为 8.82%，而低温贮藏下，40 d时为 8.3%。由此可知，拮抗菌可以延缓果实失重率的上升，同时结合低温贮藏可以更加有效延缓果实失重率的上升，延长甜瓜贮藏时间。
常温和低温贮藏条件下，各处理甜瓜果肉的硬度随着贮藏时间的延长，均呈现逐渐下降的趋势。常温下，T1 处理果实硬度在 5 d 时为 10.17kg/cm2，25 d 时硬度降低至 8.07 kg/cm2，且高出 CK 组 68.13%。
低温下，T1 处理在 30 d 时甜瓜果实硬度为 7.70 kg/cm2，高于 T3 处理 42.59%，在 50 d 时降低至 6.20 kg/cm2，高于 CK 和 T3 处理 26.53%。T1 处理在常温贮藏 25 d时硬度为8.07 kg/cm2,低温贮藏 40d 时硬度为 7.80 kg/cm2。说明括抗菌可以减缓果实软化,使果实保持更好的质地，并且结合低温贮藏能更长时间保持果实的质地。
在整个贮藏期间，各个处理甜瓜果皮色泽亮度值 L 值均呈现上升趋势。常温下，T3 处理果皮色泽亮度 L 值上升较快，T1 和 T2 处理L 值上升较平缓，在10 d 时，CK 组果皮色泽亮度为 53.17，T1处理L 值为 47.02。
在 40 d时，CK 组果皮色泽亮度为 56.13，T2 处理 L 值为 50.48。T1、T2 处理在常温下第 20d时L 值分别为 52.23 和 51.99，而在低温 40 d 时分别为 51.26 和 50.48.色饱和度 C 也随着贮藏时间的延长逐渐上升。常温下，T1、T2 处理在贮藏前 15d甜瓜色饱和度 C 均缓慢上升,20 d 时,C 值均为 17.06 左右，而 CK 组为 20.91。
低温下30d的时候，CK 组色饱和度 C 为 17.58，T1 处理 C 值为 14.68。T1 处理在常温贮藏 20 d 时色饱和度 C 值是 CK 组的81.68%,而在低温贮藏第 30d 时 C值时 CK 组的 83.50%。说明拮抗菌能较好的维持甜瓜果皮色度，且在低温条件下维持的时间更长。
从甜瓜根际土壤分离得到一株拮抗菌通过 gyrB、rpoB 和 16S rDNA 基因序列将其鉴定为贝莱斯芽抱杆菌，从甜瓜上分离得到一株病原菌通过 tef、 tub 和ITS 基因序列将其鉴定为尖抱刀菌。
贝莱斯芽抱杆菌发酵液与尖抱镰刀菌发酵液浓度比为2:1时分生抱子萌发的抑制率为 99.30%，浓度比为 1:1 时分生抱子萌发的抑制率为 95.45%，浓度比为 1:2 时分生抱子萌发的抑制率为 90.00%贝莱斯芽抱杆菌对尖抱镰刀菌菌丝生长的相对抑制率为 60.11%。
POD 活性在常温贮藏 25 d 时，BG-2与 CH-3 处理活性为 2.45X 103U/g·FW。BG-2 处理为 1.84X 103U/g·FW。POD 活性在低温贮藏 50 d 时，BG-2处理和 BG-2与 CH-3 处理活性分别为 2.56X 10 U/g·FW 和2.70X 10 U/gFW。CAT 活性在常温贮藏25d 时，BG-2 处理为 4.48 mol/min/g·FW，BG-2与 CH-3处理为8.04 umol/min/g·FW。在低温贮藏 50 d 时，BG-2 处理为 19.59umol/min/g·FW，BG-2与 CH-3 处理为 21.81 umol/min/g·FW。
