Oka等利用TLC-FAB-MS检测了OTC、TC、CTC、DC在牛组织和牛奶中的残留，LOD为50μg/kg。Crecelius等还利用TLC-基质辅助激光解析电离-飞行时间质谱（MALDI-TOF-MS）检测了TCs在动物源性食品中的残留。
Blanchflower等用APCI-LC-MS对动物组织中OTC、TC、CTC进行了多残留分析，为更好地确证分析，他们运用选择性离子监测（SIM）技术对质子化的分子离子进行分析，[M＋H]＋、[M＋H-NH3]＋、[M＋H-H2O]＋、[M＋H-NH3-H2O]＋、[M＋H-2H2O]＋为OTC、TC主要的特征分子离子，CTC的特征分子离子中无[M＋H-NH3-H2O]＋，LOD可达001～002mg/kg。
Carson等将用冰乙酸提取的牛奶和丁二酸（pH4）提取的虾样品上清液加入用硫酸铜处理的MCAC柱，依次用5mL 0.5mol/L氯化钠、10mL水、10mL甲醇和10mL水洗涤，用3mL含0.5mol/L氯化钠和0.1mol/LEDTA-Na2的McIlvaine缓冲液洗脱收集，再用SPE柱净化一次，甲醇洗脱，洗脱液体在45～55℃氮气下吹干，残渣用1mL水复溶，用PLRP-S分离柱，以甲醇-5mmol/L草酸（58∶42）做流动相，0.5mL/min的流速分离TCs，用LC-PB-MS进行检测。
Nakazawa等用APCI-LC-MS/MS建立了动物组织、蜂蜜、奶、鸡蛋、鱼组织中TCs的多残留分析方法，检测限为0.001mg/kg（TC、OTC）、0.004mg/kg（CTC）、0.002mg/kg（DC）。由于流动相中草酸和EDTA的存在，为避免毛细管接口堵塞及在离子源处沉积，因草酸可在高温下分解为二氧化碳和水，Nakazawa等通过调节APCI的表面温度和雾化器温度（将雾化器温度设为475℃），可使APCI至少保持1周不堵塞。
Cherlet等用0.1mol/L琥珀酸缓冲溶液（pH4.0）脱蛋白质，经HLB固相萃取柱净化，建立了猪肌肉、皮＋脂肪、肝、肾等组织中EOTC、OTC、ETC、TC、DMCTC、ECTC、CTC、EDOX和DOX9种TCs的LC-ESI-MS/MS多残留检测分析方法，监测到的特征分子离子主要有3组:①m/z444、428、462、428、448，分别为EOTC、ETC、ECTC、EDOX和DMCTC的[M＋H－NH3]＋；②m/z443、427、461，分别为EOTC、ETC、ECTC的[M＋H－H2O]＋，未监测到EDOX和DMCTC的[M＋H－H2O]＋；③m/z426、410、444、430，分别为EOTC、ETC、ECTC和DMCTC的[M＋H－NH3－H2O]＋，未监测EDOX的[M＋H－NH3－H2O]＋。同时研究者还注意到不同TCs和其差向异构体具有不同的[M＋H－NH3]＋/[M＋H－H2O]＋（相对丰度比），差向异构体的[M＋H-NH3]＋/[M＋H-H2O]＋通常高于TCs的，表明TCs差向异构体更容易丢失NH3。[M＋H-NH3]＋、[M＋H-H2O]＋可作为TCs和差向异构体定量的特征分子离子，而[M＋H-NH3-H2O]＋可作为TCs和差向异构体定性的特征分子离子，如图5-36所示。
Andersen等以0.1%蚁酸-乙腈-甲醇为流动相，流速为0.2mL/min，进样量20μL。虾、牛奶样品分别用10mL琥珀酸提取2次，虾组织额外用5mL含1g氧化铝的0.01mol/L草酸溶液提取，离心取上清液，经HLB固相萃取柱净化，洗脱液用氮气吹干后，用0.1%蚁酸复溶，进行LC-MS/MS分析、SRM监测。通过优化碰撞能量，使每个子离子得到最大的相对丰度，将母离子[M＋H]＋导入碰撞室，使母离子获得高效的碰撞诱导解离（CID），在SRM方式下，利用3个特征分子离子及其相对丰度对样品中的OTC、TC、CTC进行确证，母离子裂解的主要产物离子见表5-26。在虾组织中，以50～400ng/g添加的OTC、TC、CTC的平均回收率分别为82.9%、93.2%和76.8%，RSD分别为8.3%、7.2%和9.2%，在牛奶样品中，50～400ng/g添加的OTC、TC、CTC的平均回收率分别为86.0%、87.7%和79.8%，RSD分别为8.3%、4.0%和6.1%。
